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抗体纯化方法有哪些？
文章来源：原创
作者：genecreate
发布时间：2017-09-12 10:51
抗体制备出来之后，需要进一步纯化得到纯的多抗或单抗，既有利于保存也有利于排除杂蛋白对结果的影响。常规用于纯化的材料是腹水和细胞培养上清，而通常经过免疫制备的抗体大多数是igg的各种亚型，以及少数是igm，二者电泳条带分步大致如下：
硫酸铵沉淀法
基本原理：高浓度的硫酸铵通过与球蛋白竞争水分子破坏蛋白表明的水化膜，降低球蛋白的溶解性，是分离免疫球蛋白的常用方法，而且不同的免疫球蛋白适宜的硫酸铵浓度也稍有差别，一般用来分离抗体的硫酸铵饱和度在33~50%。
适用于：鼠抗所有亚类、其他种属抗体、任何种属的igm、igg、iga
基本操作：
1.过滤、离心腹水或者培养上清得上清；
2.加入饱和硫酸铵至终浓度45%，静置沉淀蛋白；
3.沉淀蛋白用最小体积pbs或硼酸盐缓冲液溶解，用pbs或硼酸盐缓冲液透析除盐；
4.过聚丙烯酰胺葡聚糖凝胶柱，pbs或硼酸盐（含0.02%叠氮钠）缓冲液洗脱；
5.电泳检测分子量大小，分光光度法测定抗体浓度；
6.抗体保存浓度在0.1-30 mg/ml适宜，-20 ℃保存不超过一个月，避免反复冻融。
亲和层析法
基本原理：基因工程改造的protein a和protein g能特异性结合哺乳动物igg的fc区段，将protein a和protein g结合到柱料上，通过亲和层析的方式，可将igg及其亚类与片段纯化出来。
成员介绍：protein a分离自staphylococcus aureus的细胞壁，分子量42 kda，由spa基因编码，具有五个同型的免疫球蛋白结合结构域，每个结构域由三个α螺旋构成。
protein a的b结构域
protein a的各个结构域
protein a可结合多数免疫球蛋白的fc段（尤其是人的igg1、igg2、igg4，豚鼠，猕猴，鼠类igg2a、兔）以及人vh3家族的fab段。基因工程改造的protein a通常使用大肠杆菌作为表达宿主，表达产物仍含有五个fc结合结构域。对其结构上的改造主要是为了增加与多孔性材料的偶联性能，也有的改造protein a含有四个或六个同型fc结合结构域，另外结构域数目较少的protein a能得到更好的抗体纯化效果。
protein g分离自g streptococcus的细胞壁，分子量65 kda，由spg基因编码，可结合抗体的fc段、fab段以及血清中的白蛋白。基因工程改造的protein g去掉了与白蛋白的结合位点仅仅保留fc结合结构域，其结合力较protein a更强。
protein g的b结构域
protein g的各个结构域
还有一种protein a/g蛋白，是基因工程改造产物，是将protein a的4个fc结合结构域与protein g的2个fc结合结构域融合表达得到的。protein a/g结合了二者的特性，能结合人和鼠的igg所有亚型，不结合鼠的iga、igm。
①protein a亲和层析
适用于：人（igg3除外）、兔、豚鼠、猪的抗体；
基本操作：
1.过滤、离心腹水或者培养上清得上清；
2.调节ph到8.0：腹水以10倍体积ph8.0 pbs稀释、培养上清用ph8.0 pbs透析或强氧化钠调节；
3.过protein a琼脂糖凝胶柱，ph8.0 pbs洗杂；
4.柠檬酸缓冲液洗脱抗体（小鼠igg1用ph6.5，igg2a用ph4.5，igg2b和igg3用ph3.0），并注意收集管内需加入tris缓冲液中和滴下的抗体溶液；
5.用pbs透析；
6.电泳检测分子量大小，分光光度法测定抗体浓度。
②protein g亲和层析
与protein a相比，protein g通常情况下在低ph环境下与抗体结合力较强，不过高ph环境下小鼠igg1和兔、人的抗体在仍可以与protein g结合。
适用于：小鼠igg1、大鼠抗体、猴抗体、兔抗体、牛抗体、山羊抗体、马抗体、绵羊抗体；
基本操作：
1.过滤、离心腹水或者培养上清得上清；
2.调节ph到5.0：腹水以10倍体积0.1 m醋酸钠（ph5.0）稀释、培养上清以2倍体积0.1 m醋酸钠（ph5.0）稀释；
3.过protein g柱，0.1 m醋酸钠（ph5.0）洗杂；
4.0.1 m甘氨酸（ph2.8）洗脱抗体，并注意收集管内需加入tris缓冲液中和滴下的抗体溶液
5.用pbs透析；
6.电泳检测分子量大小，分光光度法测定抗体浓度。
③抗原亲和层析法
抗原亲和纯化一般用在多抗的纯化上，这种纯化方式去掉了血清中那些非特异性结合的抗体分子，得到的抗体分子基本上都是能特异性与抗原结合的。抗原亲和纯化需要先将抗原偶联到柱料上，然后通过亲和层析的方式去除非特异性抗体及杂蛋白，得到特异性抗体。通常采用的柱料为溴化氢预处理和n-羟基琥珀酰亚胺预处理琼脂糖凝胶柱料，前者适合偶联大分子，后者适合偶联小分子物质，在实际操作中还是需要根据情况进行选择。
适用于：多抗抗体的纯化，对抗体亚型无限制
偶联基本操作：
1.抗原用0.1 m nahco3偶联缓冲液（含0.5 m nacl，ph8.3）溶解；
2.用1 mm稀盐酸洗涤柱料；
3.混合抗原和柱料，在室温混悬1 h或者4 ℃混悬过夜；
4.用偶联缓冲液洗涤偶联的柱料去掉未偶联抗原；
5.用0.1 m tris（ph8.0）或1 m乙醇胺（ph8.0）处理偶联柱料2 h以封闭未偶联位点；
6.依次用0.1 m醋酸钠缓冲液（含0.5 m nacl，ph4.0）和0.1 m tris（含0.5 m nacl，ph8.0）洗涤偶联柱料五次，重复此操作三遍。
纯化基本操作：
1.过滤、离心腹水或者培养上清得上清；
2.0.01 m pbs（ph7.4）平衡偶联柱料；
3.抗体样品过柱，0.01 m pbs（ph7.4）洗杂；
4.抗体洗脱液洗脱抗体；
5.用0.01 m pbs（ph7.4）透析；
6.电泳检测分子量大小，分光光度法测定抗体浓度。
随着技术的发展抗体的纯化方法越来越多，例如分子筛层析、离子交换层析等技术也被用于抗体的纯化，在实际运用中需要根据实验目的及其他因素进行方法的选择。
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